Український антарктичний журнал

Том 24 № 1(32) (2026): Український антарктичний журнал
Articles

Біологічний потенціал культивованої мікробіоти мохоподібних з різних біотопів морської Антарктики

PDF (English)
  • Ольга Масловська,
  • Соломія Комплікевич,
  • Ласло Уліганець,
  • Ірина Вронська,
  • Тарас Перетятко,
  • Іван Парнікоза,
  • Світлана Гнатуш
Ольга Масловська
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна
Соломія Комплікевич
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна
Ласло Уліганець
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна
Ірина Вронська
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна
Тарас Перетятко
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна; Державна установа Національний антарктичний науковий центр, МОН України, м. Київ, 01601, Україна
Іван Парнікоза
Державна установа Національний антарктичний науковий центр, МОН України, м. Київ, 01601, Україна; Національний історико-архітектурний музей «Київська фортеця», м. Київ, 01133, Україна
Світлана Гнатуш
Львівський національний університет імені Івана Франка, м. Львів, 79005, Україна
DOI: https://doi.org/10.33275/1727-7485.1.2026.761
Опубліковано July 2, 2026
Ключові слова
Як цитувати
Масловська, О., Комплікевич, С., Уліганець, Л., Вронська, І., Перетятко, Т., Парнікоза, І., & Гнатуш, С. (2026). Біологічний потенціал культивованої мікробіоти мохоподібних з різних біотопів морської Антарктики. Український антарктичний журнал, 24(1(32), 100-123. https://doi.org/10.33275/1727-7485.1.2026.761

Авторське право (c) 2026 Український антарктичний журнал

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Анотація

Антактичні субстрати населені мікроорганізмами, стійкими до впливу факторів довкілля. Оскільки значні площі ґрунтів у всьому світі є засоленими та забрудненими металами, що обмежує ріст рослин, важливо виділити стійкі до впливу чинників середовища фітостимулювальні бактерії. Метою дослідження було виділення копіотрофних, оліготрофних, олігонітрофільних бактерій, а також фосфат- та цинксолюбілізувальних бактерій і визначення їхніх властивостей, зокрема ферментативних, здатності до синтезу ауксинів та сидерофорів, а також росту за впливу важких металів і NaCl. Матеріалом для дослідження були зразки мохоподібних з субформації мохів, які формують неглибокий торф та куртини: Andreaea depressinervis або Andreaea regularis; угруповання килимових мохів з домінуванням Ceratodon purpureus або Sanionia georgicouncinata та фрагментів угруповання торф’янистих мохів (мохові банки) з домінуванням Polytrichum strictum або Chorisodontium aciphyllum, зібраних з різних біотопів морської Антарктики. Культивована мікробіота субформацій мохів, а також мохових банків відрізнялася за кількістю виявлених груп мікроорганізмів і їхньою чисельністю. У структурі бактеріальних угруповань більшості зразків домінували копіотрофи та оліготрофи, проте у зразку An. depressinervis переважали олігонітрофіли. Бактерії, виділені зі зразків субформації мохів, які формують неглибокий торф та куртини з домінуванням San. georgicouncinata, характеризувалися амілазною, протеазною, целюлазною, ліпазною активностями, здатністю солюбілізувати ZnO і Ca3(PO4)2. Усі досліджені ізоляти
синтезували ауксиноподібні сполуки (до 11,8 мкг ⋅ мл–1), більшість – сидерофори. Виявлено адаптивні властивості ізолятів: здатність до росту в широкому температурному діапазоні (від +4 до +42 °C), високу галотолерантність (до 10,0% NaCl) та резистентність до важких металів (Mn2+, Fe2+, Cu2+, Cd2+, Co2+ і Cr2O72–). За результатами сиквенування гена 16S рРНК ідентифіковано Bacillus sp. Sg840, Pseudomonas sp. S135 та Sporosarcina sp. S371. Виявлені властивості та стійкість до факторів навколишнього середовища характеризують фітостимулювальний потенціал бактерій, виділених із субформацій антарктичних мохоподібних.

PDF (English)

Посилання

  1. Abdel Latef, A. A. H., Akter, A., & Tahjib-Ul-Arif, Md. (2021). Foliar Application of Auxin or Cytokinin Can Confer Salinity Stress Tolerance in Vicia faba L. Agronomy, 11(4), 790. https://doi.org/10.3390/agronomy11040790
  2. Ahmed, S., Rahman, M. S., Hasan, M. M., Paul, N., & Sajib, A. A. (2018). Microbial degradation of lignocellulosic biomass: discovery of novel natural lignocellulolytic bacteria. BioTechnologia, 99(2), 137–146. https://doi.org/10.5114/bta.2018.75657
  3. Anderson, R. O., Chown, S. L., & Leihy, R. I. (2024). Continent-wide analysis of moss diversity in Antarctica. Ecography, 2025(2), e07353. Portico. https://doi.org/10.1111/ecog.07353
  4. Arenas, F. A., Pugin, B., Henríquez, N. A., Arenas-Salinas, M. A., Díaz-Vásquez, W. A., Pozo, M. F., Muñoz, C. M., Chasteen, T. G., Pérez-Donoso, J. M., & Vásquez, C. C. (2014). Isolation, identification and characterization of highly tellurite-resistant, tellurite-reducing bacteria from Antarctica. Polar Science, 8(1), 40–52. https://doi.org/10.1016/j.polar.2014.01.001
  5. Arora, N. K., & Verma, M. (2017). Modified microplate method for rapid and efficient estimation of siderophore produced by bacteria. 3 Biotech, 7(6), 381. https://doi.org/10.1007/s13205-017-1008-y
  6. Ashby, S. F. (1907). Some observations on the assimilation of atmospheric nitrogen by a free living soil organism – Azotobacter chroococcum of Beijerinck. The Journal of Agricultural Science, 2(01), 35–51. https://doi.org/10.1017/s0021859600000988
  7. Aznar, A., Chen, N. W. G., Rigault, M., Riache, N., Joseph, D., Desmaële, D., Mouille, G., Boutet, S., Soubigou-Taconnat, L., Renou, J.-P., Thomine, S., Expert, D., & Dellagi, A. (2014). Scavenging Iron: A Novel Mechanism of Plant Immunity Activation by Microbial Siderophores. Plant Physiology, 164(4), 2167–2183. https://doi.org/10.1104/pp.113.233585
  8. Barra, P. J., Inostroza, N. G., Acuña, J. J., Mora, M. L., Crowley, D. E., & Jorquera, M. A. (2016). Formulation of bacterial consortia from avocado (Persea americana Mill.) and their effect on growth, biomass and superoxide dismutase activity of wheat seedlings under salt stress. Applied Soil Ecology, 102, 80–91. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2016.02.014
  9. Bhakat, K., Chakraborty, A., & Islam, E. (2021). Characterization of zinc solubilization potential of arsenic tolerant Burkholderia spp. isolated from rice rhizospheric soil. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 37(3), 39. https://doi.org/10.1007/s11274-021-03003-8
  10. Bhakta, S., Rout, T. K., Karmakar, D., Pawar, C., & Padhy, P. K. (2022). Trace elements and their potential risk assessment on polar ecosystem of Larsemann Hills, East Antarctica. Polar Science, 31, 100788. https://doi.org/10.1016/j.polar.2022.100788
  11. Bones, F. L. V., Câmara, P. E. A. S., Carvalho-Silva, M., Lopes, F. A. C., Convey, P., Barreto, C. C., & Rosa, L. H. (2026). Investigating the diversity contained in an established moss carpet in Admiralty Bay, King George Island (maritime Antarctic), using DNA metabarcoding. Polar Biology, 49(2). https://doi.org/10.1007/s00300-026-03490-1
  12. Cackett, L., Cannistraci, C. V., Meier, S., Ferrandi, P., Pěnčík, A., Gehring, C., Novák, O., Ingle, R. A., & Donaldson, L. (2022). Salt-Specific Gene Expression Reveals Elevated Auxin Levels in Arabidopsis thaliana Plants Grown Under Saline Conditions. Frontiers in Plant Science, 13, 804716. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.804716
  13. Carrell, A. A., Lawrence, T. J., Cabugao, K. G. M., Carper, D. L., Pelletier, D. A., Lee, J. H., Jawdy, S. S., Grimwood, J., Schmutz, J., Hanson, P. J., Shaw, A. J., & Weston, D. J. (2022). Habitat-adapted microbial communities mediate Sphagnum peatmoss resilience to warming. New Phytologist, 234(6), 2111–2125. Portico. https://doi.org/10.1111/nph.18072
  14. Castro, M. F., Neves, J. C. L., Francelino, M. R., Schaefer, C. E. G. R., & Oliveira, T. S. (2021). Seabirds enrich Antarctic soil with trace metals in organic fractions. Science of The Total Environment, 785, 147271. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.147271
  15. Cho, S., Lee, H., Hong, S., & Lee, J. (2020). Study of Ecophysiological Responses of the Antarctic Fruticose Lichen Cladonia borealis Using the PAM Fluorescence System under Natural and Laboratory Conditions. Plants, 9(1), 85. https://doi.org/10.3390/plants9010085
  16. Choi, H., Lee, Y., Jin, H., Yu, J., Lee, H., Choi, D., & Lee, J. (2026). Antarctic moss fairy rings serve as reservoirs for plant growth-promoting bacteria. BMC Plant Biology, 26(1), 299. https://doi.org/10.1186/s12870-026-08127-3
  17. Coppola, D., Lauritano, C., Zazo, G., Nuzzo, G., Fontana, A., Ianora, A., Costantini, M., Verde, C., & Giordano, D. (2023). Biodiversity of UV-Resistant Bacteria in Antarctic Aquatic Environments. Journal of Marine Science and Engineering, 11(5), 968. https://doi.org/10.3390/jmse11050968
  18. Couso, L. L., Soler-Bistué, A., Aptekmann, A. A., & Sánchez, I. E. (2023). Ecology theory disentangles microbial dichotomies. Environmental Microbiology, 25(12), 3052–3063. Portico. https://doi.org/10.1111/1462-2920.16495
  19. Darham, S., Zakaria, N. N., Zulkharnain, A., Sabri, S., Khalil, K. A., Merican, F., Gomez-Fuentes, C., Lim, S., & Ahmad, S. A. (2023). Antarctic heavy metal pollution and remediation efforts: state of the art of research and scientific publications. Brazilian Journal of Microbiology, 54(3), 2011–2026. https://doi.org/10.1007/s42770-023-00949-9
  20. DeLuca, T. H., Zackrisson, O., Nilsson, M.-C., & Sellstedt, A. (2002). Quantifying nitrogen-fixation in feather moss carpets of boreal forests. Nature, 419(6910), 917–920. https://doi.org/10.1038/nature01051
  21. de Werra, P., Péchy-Tarr, M., Keel, C., & Maurhofer, M. (2009). Role of Gluconic Acid Production in the Regulation of Biocontrol Traits of Pseudomonas fluorescensCHA0. Applied and Environmental Microbiology, 75(12), 4162–4174. https://doi.org/10.1128/aem.00295-09
  22. Fan, B., Wang, C., Song, X., Ding, X., Wu, L., Wu, H., Gao, X., & Borriss, R. (2018). Bacillus velezensis FZB42 in 2018: The Gram-Positive Model Strain for Plant Growth Promotion and Biocontrol. Frontiers in Microbiology, 9. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02491
  23. Gang, S., Sharma, S., Saraf, M., Buck, M., & Schumacher, J. (2019). Analysis of indole-3-acetic acid (IAA) production in Klebsiella by LC-MS/MS and the Salkowski method. BIO-PROTOCOL, 9(9), e3230. https://doi.org/10.21769/bioprotoc.3230
  24. Gohel, H. R., Contractor, C. N., Ghosh, S. K., & Braganza, V. J. (2014). A comparative study of various staining techniques for determination of extracellular cellulase activity on carboxy methyl cellulose (CMC) agar plates. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 3(5), 261–266.
  25. Grzyb, A., Wolna-Maruwka, A., & Niewiadomska, A. (2021). The Significance of Microbial Transformation of Nitrogen Compounds in the Light of Integrated Crop Management. Agronomy, 11(7), 1415. https://doi.org/10.3390/agronomy11071415
  26. Hnatush, S., Maslovska, O., Komplikevych, S., & Vronska, I. (2026). Seed germination, root and shoot length and pigment content in leaves of spring wheat cultivar Tybalt treated with bacterial isolates from Antarctic mosses. Zenodo. https://doi.org/10.5281/zenodo.20363981
  27. Holland-Moritz, H., Stuart, J. E. M., Lewis, L. R., Miller, S. N., Mack, M. C., Ponciano, J. M., McDaniel, S. F., & Fierer, N. (2021). The bacterial communities of Alaskan mosses and their contributions to N2-fixation. Microbiome, 9(1), 53. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01001-4
  28. Hudz’, S. P., Hnatush, S. O., Yavorska, H. V., Bilinska, I. S., & Borsukevych, B. M. (2014). Guidebook on microbiology. Publishing centre at Ivan Franko Lviv National University, Lviv. (In Ukrainian)
  29. Ishak, S., Rondeau-Leclaire, J., Faticov, M., Roy, S., & Laforest-Lapointe, I. (2024). Boreal moss-microbe interactions are revealed through metagenome assembly of novel bacterial species. Scientific Reports, 14(1), 22168. https://doi.org/10.1038/s41598-024-73045-z
  30. Iungin, O., Prekrasna-Kviatkovska, Y., Kalinichenko, O., Moshynets, O., Potters, G., Sidorenko, M., Savchuk, Y., & Mickevičius, S. (2024). Endophytic Bacterial Biofilm-Formers Associated with Antarctic Vascular Plants. Microorganisms, 12(10), 1938. https://doi.org/10.3390/microorganisms12101938
  31. Janarthine, S. R. S., & Eganathan, P. (2012). Plant Growth Promoting of Endophytic Sporosarcina aquimarina SjAM16103 Isolated from the Pneumatophores of Avicennia marina L. International Journal of Microbiology, 2012, 1–10. https://doi.org/10.1155/2012/532060
  32. Jomova, K., Baros, S., & Valko, M. (2012). Redox active metal-induced oxidative stress in biological systems. Transition Metal Chemistry, 37(2), 127–134. https://doi.org/10.1007/s11243-012-9583-6
  33. Kimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16(2), 111–120. https://doi.org/10.1007/bf01731581
  34. Kip, N., van Winden, J. F., Pan, Y., Bodrossy, L., Reichart, G.-J., Smolders, A. J. P., Jetten, M. S. M., Damsté, J. S. S., & Op den Camp, H. J. M. (2010). Global prevalence of methane oxidation by symbiotic bacteria in peat-moss ecosystems. Nature Geoscience, 3(9), 617–621. https://doi.org/10.1038/ngeo939
  35. Komplikevych, S., Maslovska, O., Peretyatko, T., Moroz, O., Diakiv, S., Zaritska, Y., Parnikoza, I., & Hnatush, S. (2022). Culturable microorganisms of substrates of terrestrial plant communities of the maritime Antarctic (Galindez Island, Booth Island). Polar Biology, 46(1), 1–19. https://doi.org/10.1007/s00300-022-03103-7
  36. Kovalenko, P., Pavlovska, M., Prekrasna-Kviatkovska, Y., Puhovkin, A., Kozeretska, I. (2025). The microbiome of Antarctica’s endemic chironomid midge: from general microbial community to endosymbiotic bacteria. bioRxiv 2025.12.13.694143. https://doi.org/10.64898/2025.12.13.694143
  37. Kumar, S., Stecher, G., Suleski, M., Sanderford, M., Sharma, S., & Tamura, K. (2024). MEGA12: Molecular Evolutionary Genetic Analysis Version 12 for Adaptive and Green Computing. Molecular Biology and Evolution, 41(12), msae263. https://doi.org/10.1093/molbev/msae263
  38. Lehosmaa, K., Koskimäki, J. J., Podolich, O., Ahonen, S. H. K., Ruotsalainen, A. L., Wäli, P. R., Greger, M., Rashid, U., Baruah, N., Edesi, J., Markkola, A., Kiani, S., Postila, H., Kujala, K., Ronkanen, A.-K., & Pirttilä, A. M. (2025). Aquatic moss precipitates metals in the presence of a specific endophytic microbiome. iMetaOmics, 3(1). Portico. https://doi.org/10.1002/imo2.70061
  39. Lemanceau, P., Bauer, P., Kraemer, S., & Briat, J.-F. (2009). Iron dynamics in the rhizosphere as a case study for analyzing interactions between soils, plants and microbes. Plant and Soil, 321(1–2), 513–535. https://doi.org/10.1007/s11104-009-0039-5
  40. Lin, J., Rayhan, A. B. M. S., Wang, Y., Wu, Z., Lin, Y., Ke, H., Li, T., Chen, K., & Cai, M. (2021). Distribution and contamination assessment of heavy metals in soils and sediments from the Fildes Peninsula and Ardley Island in King George Island, Antarctica. Polar Research, 40. https://doi.org/10.33265/polar.v40.5270
  41. Luo, L., Zhao, C., Wang, E., Raza, A., & Yin, C. (2022). Bacillus amyloliquefaciens as an excellent agent for biofertilizer and biocontrol in agriculture: An overview for its mechanisms. Microbiological Research, 259, 127016. https://doi.org/10.1016/j.micres.2022.127016
  42. Maslovska, O., Komplikevych, S., Danylo, I., Parnikoza, I., & Hnatush, S. (2024). Plant growthpromoting potential of bacterial isolates from the rhizosphere of Deschampsia antarctica. Ukrainian Antarctic Journal, 22(1(28)), 63–81. https://doi.org/10.33275/1727-7485.1.2024.728
  43. Maslovska, O., Komplikevych, S., & Hnatush, S. (2023). Oxidative stress and protection against it in bacteria. Studia Biologica, 17(2), 153–172. https://doi.org/10.30970/sbi.1702.716
  44. Mehmood, N., Saeed, M., Zafarullah, S., Hyder, S., Rizvi, Z. F., Gondal, A. S., Jamil, N., Iqbal, R., Ali, B., Ercisli, S., & Kupe, M. (2023). Multifaceted Impacts of Plant-Beneficial Pseudomonas spp. in Managing Various Plant Diseases and Crop Yield Improvement. ACS Omega, 8(25), 22296–22315. https://doi.org/10.1021/acsomega.3c00870
  45. Mumtaz, M. Z., Barry, K. M., Baker, A. L., Nichols, D. S., Ahmad, M., Zahir, Z. A., & Britz, M. L. (2019). Production of lactic and acetic acids by Bacillus sp. ZM20 and Bacillus cereus following exposure to zinc oxide: A possible mechanism for Zn solubilization. Rhizosphere, 12, 100170. https://doi.org/10.1016/j.rhisph.2019.100170
  46. Musazade, E., Mrisho, I. I., & Feng, X. (2025). Auxin metabolism and signaling: Integrating independent mechanisms and crosstalk in plant abiotic stress responses. Plant Stress, 18, 101034. https://doi.org/10.1016/j.stress.2025.101034
  47. Nautiyal, C. S. (1999). An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiology Letters, 170(1), 265–270. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1999.tb13383.x
  48. Nędzarek, A., Tórz, A., & Drost, A. (2014). Selected elements in surface waters of Antarctica and their relations with the natural environment. Polar Research, 33(1), 21417. https://doi.org/10.3402/polar.v33.21417
  49. Negi, R., Sharma, B., Kaur, T., Yadav, N., Rustagi, S., Shreaz, S., Kour, D., & Yadav, A. N. (2025). First Report on Novel Multifunctional Plant Growth Promoting Bacterium Sporosarcina globispora EU-GRN-46 from Himalayan Region of Kinnaur and Their Role on Growth Promotion of Garlic (Allium sativum L.). National Academy Science Letters. https://doi.org/10.1007/s40009-024-01594-y
  50. O’Brien, A., Sharp, R., Russell, N. J., & Roller, S. (2004). Antarctic bacteria inhibit growth of food-borne microorganisms at low temperatures. FEMS Microbiology Ecology, 48(2), 157–167. https://doi.org/10.1016/j.fem-sec.2004.01.001
  51. Ochyra, R., Bednarek-Ochyra, H., & Lewis Smith, R. I. (2008). Illustrated Moss Flora of Antarctica. Cambridge: Cambridge University Press.
  52. Osborne, P., Hall, L. J., Kronfeld-Schor, N., Thybert, D., & Haerty, W. (2020). A rather dry subject; investigating the study of arid-associated microbial communities. Environmental Microbiome, 15(1), 20. https://doi.org/10.1186/s40793-020-00367-6
  53. Park, J., Kang, D., Jang, J. W., Choi, S., Jeong, S., Kim, S., & Kim, D. (2025). Moss-derived microbiome improves crop growth in lunar and Martian soil simulants. Ecological Indicators, 178, 114023. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2025.114023
  54. Parnikoza, I., Berezkina, A., Moiseyenko, Y., Malanchuk, V., & Kunakh, V. (2018). Complex Survey of the Argentine Islands and Galindez Island (Maritime Antarctic) as a Research Area for Studying the Dynamics of Terrestrial Vegetation. Ukrainian Antarctic Journal, (1(17), 73–101. https://doi.org/10.33275/1727-7485.1(17).2018.34
  55. Perera-Castro, A. V., Waterman, M. J., Turnbull, J. D., Ashcroft, M. B., McKinley, E., Watling, J. R., Bramley-Alves, J., Casanova-Katny, A., Zuniga, G., Flexas, J., & Robinson, S. A. (2020). It Is Hot in the Sun: Antarctic Mosses Have High Temperature Optima for Photosynthesis Despite Cold Climate. Frontiers in Plant Science, 11, 1178. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01178
  56. Prather, H. M., Casanova-Katny, A., Clements, A. F., Chmielewski, M. W., Balkan, M. A., Shortlidge, E. E., Rosenstiel, T. N., & Eppley, S. M. (2019). Species-specific effects of passive warming in an Antarctic moss system. Royal Society Open Science, 6(11), 190744. https://doi.org/10.1098/rsos.190744
  57. Prekrasna, Ie., Dzhulai, A., & Parnikoza, I. (2021). Preliminary estimates of the number and diversity of the culturable endophytic bacteria from Deschampsia antarctica and Colobanthus quitensis. Bulletin of the Ukrainian Society of Geneticists and Breeders, 19(1–2), 21–30. https://doi.org/10.7124/visnyk.utgis.19.1-2.1437
  58. Prekrasna-Kviatkovska, Y., Parnikoza, I., Yerkhova, A., Stelmakh, O., Pavlovska, M., Dzyndra, M., Yarovyi, O., & Dykyi, E. (2024). From acidophilic to ornithogenic: microbial community dynamics in moss banks altered by gentoo penguins. Frontiers in Microbiology, 15, 1362975. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1362975
  59. Ramasamy, K. P., Mahawar, L., Rajasabapathy, R., Rajeshwari, K., Miceli, C., & Pucciarelli, S. (2023). Comprehensive insights on environmental adaptation strategies in Antarctic bacteria and biotechnological applications of cold adapted molecules. Frontiers in Microbiology, 14. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1197797
  60. Ramos Cabrera, E. V., Delgado Espinosa, Z. Y., & Solis Pino, A. F. (2024). Use of Phosphorus-Solubilizing Microorganisms as a Biotechnological Alternative: A Review. Microorganisms, 12(8), 1591. https://doi.org/10.3390/microorganisms12081591
  61. Rapacka-Zdonczyk, A. (2026). Beyond Resistance: Phenotypic Plasticity in Bacterial Responses to Antibiotics, Oxidative Stress and Antimicrobial Photodynamic Inactivation. Molecules, 31(3), 567. https://doi.org/10.3390/molecules31030567
  62. Romero-Perez, P. S., Dorone, Y., Flores, E., Sukenik, S., & Boeynaems, S. (2023). When Phased without Water: Biophysics of Cellular Desiccation, from Biomolecules to Condensates. Chemical Reviews, 123(14), 9010–9035. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.2c00659
  63. Sayyed, R. Z., Chincholkar, S. B., Reddy, M. S., Gangurde, N. S., & Patel, P. R. (2012). Siderophore Producing PGPR for Crop Nutrition and Phytopathogen Suppression. In D. Maheshwari (Ed.), Bacteria in Agrobiology: Disease Management (pp. 449–471). https://doi.org/10.1007/978-3-642-33639-3_17
  64. Seo, H. J., Park, A. R., Kim, S., Yeon, J., Yu, N. H., Ha, S., Chang, J. Y., Park, H. W., & Kim, J.-C. (2019). Biological Control of Root-Knot Nematodes by Organic Acid-Producing Lactobacillus brevis WiKim0069 Isolated from Kimchi. The Plant Pathology Journal, 35(6), 662–673. https://doi.org/10.5423/ppj.oa.08.2019.0225
  65. Shuhui, Z., Liqi, C., & Hongmei L. (2015). Characteristics of trace metals in marine aerosols and their source identification over the Southern Ocean. Advances in Polar Science, 26(3), 203–214. https://doi.org/10.13679/j.advps.2015.3.00203
  66. Singh, S., Chhabra, R., Sharma, A., & Bisht, A. (2024). Harnessing the Power of Zinc-Solubilizing Bacteria: A Catalyst for a Sustainable Agrosystem. Bacteria, 3(1), 15–29. https://doi.org/10.3390/bacteria3010002
  67. Sritongon, N., Boonlue, S., Mongkolthanaruk, W., Jogloy, S., & Riddech, N. (2023). The combination of multiple plant growth promotion and hydrolytic enzyme producing rhizobacteria and their effect on Jerusalem artichoke growth improvement. Scientific Reports, 13(1), 5917. https://doi.org/10.1038/s41598-023-33099-x
  68. Styczynski, M., Biegniewski, G., Decewicz, P., Rewerski, B., Debiec-Andrzejewska, K., & Dziewit, L. (2022). Application of Psychrotolerant Antarctic Bacteria and Their Metabolites as Efficient Plant Growth Promoting Agents. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 10, 772891. https://doi.org/10.3389/fbioe.2022.772891
  69. Vašinka, M., Krmíček, L., Všianský, D., Hrbáček, F., & Nývlt, D. (2020). Chemical weathering in Antarctica: an example of igneous rock particles in Big Lachman Lake sediments, James Ross Island. Environmental Earth Sciences, 79(8). https://doi.org/10.1007/s12665-020-08926-3
  70. Vyas, P., & Gulati, A. (2009). Organic acid production in vitro and plant growth promotion in maize under controlled environment by phosphate-solubilizing fluorescent Pseudomonas. BMC Microbiology, 9(1), 174. https://doi.org/10.1186/1471-2180-9-174
  71. Warshan, D., Bay, G., Nahar, N., Wardle, D. A., Nilsson, M.-C., & Rasmussen, U. (2016). Seasonal variation in nifH abundance and expression of cyanobacterial communities associated with boreal feather mosses. The ISME Journal, 10(9), 2198–2208. https://doi.org/10.1038/ismej.2016.17
  72. Yerkhova, A., Parnikoza, I., Pavlovska, M., Yevchun, H., & Prekrasna-Kviatkovska, Y. (2022). Microbiomes of Antarctic pearlwort (Colobanthus quitensis) of the maritime Antarctic: distinct diversity and core microbes in rhizosphere and endosphere compartments of the plant. Ukrainian Antarctic Journal, 20(2), 212–240. https://doi.org/10.33275/1727-7485.2.2022.701
  73. Yevchun, H., Fedchuk, A., Drohushevska, I., Pnyovska, O., Chernyshenko, M., & Parnikoza, I. (2021). The Toponymy of the Argentine Islands area, the Kyiv Peninsula (West Antarctica).Ukrainian Antarctic Journal, (2), 127–157. https://doi.org/10.33275/1727-7485.2.2021.683
  74. Yin, H., Perera-Castro, A. V., Randall, K. L., Turnbull, J. D., Waterman, M. J., Dunn, J., & Robinson, S. A. (2023). Basking in the sun: how mosses photosynthesise and survive in Antarctica. Photosynthesis Research, 158(2), 151–169. https://doi.org/10.1007/s11120-023-01040-y
  75. Zhang, M., Xiao, Y., Song, Q., & Li, Z. (2025). Antarctic ice-free terrestrial microbial functional redundancy in core ecological functions and microhabitat-specific microbial taxa and adaptive strategy. Environmental Microbiome, 20(1). https://doi.org/10.1186/s40793-025-00735-0
  76. Živković, T., Carrell, A. A., Granath, G., Shaw, A. J., Pelletier, D. A., Schadt, C. W., Klingeman, D. M., Nilsson, M. B., Helbig, M., Warshan, D., Klarenberg, I. J., Gilbert, D., Kostka, J. E., & Weston, D. J. (2025). Host Species–Microbiome Interactions Contribute to Sphagnum Moss Growth Acclimation to Warming. Global Change Biology, 31(2). Portico. https://doi.org/10.1111/gcb.70066